Kit de testare a acidului succinic

Kitul de testare a acidului succinic este potrivit pentru analiza specifică a acidului succinic în vin, brânză, ouă, sos și alte produse alimentare.

Notă pentru conținut: Numărul de teste manuale pe set poate fi dublat dacă toate volumele sunt reduse la jumătate. Aceasta poate fi ușor adaptată utilizând spectrofotometrul de undă MegaQuant ™ (D-MQWAVE).

Răsfoiți toate kiturile noastre de testare a acidului organic.

• Stabilitate extinsă a cofactorilor. Cofactorii dizolvați stabili> 1 an la 4 o C.
• Preț foarte competitiv (cost pe test)
• Toți reactivii sunt stabili timp de> 2 ani conform furnizării
• Reacție foarte rapidă (chiar și la temperatura camerei)
• Instrumentul software Mega-Calc ™ este disponibil de pe site-ul nostru web pentru prelucrarea datelor brute fără probleme
• Standard inclus
• Potrivit pentru formate manuale, microplacă și auto-analizor

Kituri de testare a vinului „avansate” Megazyme caracteristici generale și validare.

Charnock, S. J., McCleary, B. V., Daverede, C. & Gallant, P. (2006). Revizuirea enologilor, 120, 1-5.

Multe dintre kiturile de testare enzimatică sunt metode oficiale ale unor organizații de prestigiu precum Asociația Chimicelor Analitice Oficiale (AOAC) și Asociația Americană a Chimiștilor din Cereale (AACC) ca răspuns la interesul enologilor. Megazyme a decis să-și folosească lunga istorie de bio-analiză enzimatică pentru a aduce o contribuție semnificativă la industria vinului, prin dezvoltarea unei game de truse de test enzimatice avansate. Această sarcină a fost finalizată acum cu succes prin intermediul procesului strategic și cuprinzător de identificare a limitărilor kiturilor de testare a bio-analizei enzimatice existente în care au avut loc și apoi folosind tehnici avansate, cum ar fi biologia moleculară (foto 1), pentru a le depăși rapid. De asemenea, au fost dezvoltate noi kituri de testare pentru analiți de interes emergent pentru enolog, cum ar fi azotul disponibil de drojdie (YAN; vezi paginile 2-3 din articolul nr. 117), sau în cazul în care anterior enzimele pur și simplu nu erau disponibile sau erau prea scumpe pentru angajați, cum ar fi pentru analiza D-manitol.

Analiza strugurilor și a vinului: enologii trebuie să exploateze truse de testare avansate.

Charnock, S. C. și McCleary, B. V. (2005). Revue des Enology, 117, 1-5.

Fără îndoială, testarea joacă un rol esențial pe tot parcursul procesului de vinificare. Pentru a produce vin de cea mai bună calitate posibil și pentru a minimiza problemele procesului, cum ar fi fermentarea „blocată” sau infecțiile supărătoare, este acum recunoscut că, dacă este posibil, testele ar trebui să înceapă înainte de recoltarea strugurilor și să continue până la îmbuteliere. Metodele tradiționale de analiză a vinului sunt adesea costisitoare, consumatoare de timp, necesită fie echipamente elaborate, fie expertiză de specialitate și deseori lipsesc de acuratețe. Cu toate acestea, bio-analiza enzimatică permite măsurarea exactă a marii majorități a analiților de interes pentru producătorul de vin, folosind doar o singură bucată de aparat, spectrofotometrul (a se vedea numărul anterior nr. 116 pentru o revizuire tehnică detaliată). Sucul de struguri și vinul sunt supuse testării enzimatice, deoarece sunt lichide, sunt omogene, ușor de manipulat și, în general, pot fi analizate fără preparate de probă.

van Diepen, JA, Robben, JH, Hooiveld, GJ, Carmone, C., Alsady, M., Boutens, L., Bekkenkamp-Grovenstein, MB, Hijmans, A., Engelke, UFH, Wevers, RA, Netea, MG, Tack, CJ, Stienstra, R. & Deen, PMT (2017). Diabetologie, 1-10.

Zander, D., Samaga, D., Straube, R. & Bettenbrock, K. (2017). Jurnal biofizic, 112 (9), 1984-1996.

Boonsaen, P., Kinjo, M., Sawanon, S., Suzuki, Y., Koike, S. & Kobayashi, Y. (2017). Animal Science Journal, în presă.

Chidi, B. S., Rossouw, D. & Bauer, F. F. (2016). Genetica curentă, 62 (1), 149-164.

Nickel, P. I., Chavarría, M., Fuhrer, T., Sauer, U. & de Lorenzo, V. (2015). Jurnalul de chimie biologică, 290 (43), 25920-25932.

Zhou, M., Ye, H. și Zhao, X. (2014). Biotehnologie și Ingineria Bioproceselor, 19 (2), 231-238.

O nouă bacterie heterotrofă nitrificantă și denitrifiantă aerobă, KTB, a fost izolată din flocuri de nămol activ colectate dintr-un filtru biologic aerat conform metodei Takaya modificate și identificată ca Pseudomonas stutzeri prin analiza secvenței genei 16S rDNA. Când se agită, în prezență de 4,331 mmol/L de azotat, 4,511 mmol/L de nitrit și 4,438 mmol/L de amoniu, tulpina a crescut rapid, µmax fiind de 0,42, 0,45 și 0,56/h și a prezentat un nivel ridicat de azot eficiența îndepărtării, rata de îndepărtare a azotului fiind de 0,239, 0,362 și 0,361 mmol/L/h, iar raportul de îndepărtare a azotului este de 99,1, 100,0 și 100,0% în 18 ore, respectiv. Îndepărtarea a avut loc în principal în faza logaritmică. Acumularea de nitriți nu a afectat performanța de denitrificare. Concentrația de nitrați a fost sub limita detectabilă pe parcursul întregului ciclu de creștere când amoniul a fost utilizat ca singură sursă de azot. A tolerat un nivel ridicat de DO și a prezentat o capacitate excelentă de agregare. S-a speculat o posibilă cale implicată în procesul de eliminare a azotului, care a demonstrat o cale completă de nitrificare și denitrificare. Tulpina ar putea fi un candidat excelent pentru îndepărtarea biologică a compușilor de azot din apele uzate.

Seher, Y., Filiz, O. și Melike, B. (2013). Plant Systematics and Evolution, 299 (2), 403-412.

Liszt, K. I., Walker, J. & Somoza, V. (2012). Jurnalul de chimie agricolă și alimentară, 60 (28), 7022-7030.

Melatunan, S., Calosi, P., Rundle, S. D., Moody, A. J. & Widdicombe, S. (2011). Zoologie fiziologică și biochimică, 84 (6), 583-594.

Boden, R., Murrell, J. C. și Schäfer, H. (2011). FEMS Microbiology Letters, 322 (2), 188-193.

Dimetilsulfura (DMS) este un compus organosulfuric volatil, omniprezent în oceane, căruia i-au fost atribuite diferite roluri în ciclul biogeochimic și în controlul climatului. Sunt cunoscute diverse chiuvete oceanice ale DMS - atât chimice, cât și biologice - deși sunt slab înțelese. În plus față de utilizarea DMS ca sursă de carbon sau de sulf, se știe că unele bacterii o oxidează la dimetilsulfoxid (DMSO). Sagittula stellata este un membru heterotrof al Alphaproteobacteriei găsite în mediile marine. S-a demonstrat că oxidează DMS în timpul creșterii heterotrofe pe zaharuri, dar motivele și mecanismele acestei oxidări nu au fost investigate. Aici, arătăm că oxidarea DMS la DMSO este cuplată la sinteza ATP în S. stellata și că DMS acționează ca o sursă de energie în timpul creșterii chemoorganoheterotrofice a organismului asupra fructozei și asupra succinatului. DMS dehidrogenaza (care este responsabilă de oxidarea DMS la DMSO în alte bacterii marine) și activitățile DMSO reductază au fost absente din celulele crescute în prezența DMS, indicând o cale alternativă de oxidare a DMS în acest organism.

Long, L. H. și Halliwell, B. (2011). Comunicări de cercetare biochimică și biofizică, 406 (1), 20-24.

Ascorbatul și mai mulți compuși fenolici se oxidează ușor în mediul de cultură celulară pentru a genera peroxid de hidrogen. Cu toate acestea, pe lângă α-cetoglutaratul, despre care se știe că este eliberat de mai multe tipuri de celule, nivelurile de H2O2 au scăzut, iar α-cetoglutaratul a fost epuizat și transformat în succinat. Aceste observații ar putea explica rapoartele anterioare ale efectelor protectoare ale α-cetoglutaratului în promovarea creșterii celulelor în cultură și pot contribui la explicarea unora dintre variabilitatea din literatură a ratelor raportate de producție de H2O2 din compuși autoxidabili în sistemele de cultură celulară.

Li, Q., Siles, J. A. și Thompson, I. P. (2010). Microbiologie aplicată și biotehnologie, 88 (3), 671-678.

Long, L. H. și Halliwell, B. (2011). Comunicări de cercetare biochimică și biofizică, 406 (1), 20-24.

Ascorbatul și mai mulți compuși fenolici se oxidează ușor în mediul de cultură celulară pentru a genera peroxid de hidrogen. Cu toate acestea, pe lângă α-cetoglutaratul, despre care se știe că este eliberat de mai multe tipuri de celule, nivelurile de H2O2 au scăzut, iar α-cetoglutaratul a fost epuizat și transformat în succinat. Aceste observații ar putea explica rapoartele anterioare ale efectelor protectoare ale α-cetoglutaratului în promovarea creșterii celulelor în cultură și pot contribui la explicarea unora dintre variabilitatea din literatură a ratelor raportate de producție de H2O2 din compuși autoxidabili în sistemele de cultură celulară.

• Acid succinic - Dosar de înregistrare - ECHA
• Acid succinic - o prezentare generală Subiecte ScienceDirect
• Pronunția acidului succinic
• Acid succinic ≥99% (HPLC) Selleck Alții chimice QCFile
• Șoareci obezi care pierd greutate datorită suplimentării sau alimentelor cu acid linoleic conjugat trans-10, cis-12